Q1.標曲不顯色或顯色很弱，樣本顯色

溶解標準品以及倍比稀釋時，未渦旋震動或不夠充沛。標準品溶解、倍比稀釋時均需要渦旋震動以確保充沛混勻。單純依托移液器重復吹打，效率較低、作用也不一定jia。

Q2.標曲和樣本均不顯色

在孵育階段靜置在桌面上，這樣非常不利于抗原抗體之間的充沛接觸，導致顯色偏弱。引薦孵育階段，運用ELISA的微孔板振蕩器，調至適宜的頻率，使抗原抗體充沛接觸，確保結合作用。

Q3.標曲顯色，樣本不顯色

當樣本中意圖蛋白濃度極低或許樣本中干擾因素較強，就無法檢測到。現在ELISA仍然是蛋白檢測靈敏度gao的方法，與不同技術結合后，衍生出了多種類型的ELISA，提高了檢測靈敏度。

Q4.標曲和樣本都顯色，但復孔的CV大

這個問題就跟移液器和試驗者的操作有關了。移液器的運用保護不標準，就會形成移液的差錯較大；試驗者自身的操作習氣、加樣的一致性對復孔的CV也有很大影響。把握移液器的正確運用和保護。關于個人的操作可操練移液動作、加快速度，確保移液的精密度。

Q5.本底偏高，樣本值測不到

標曲的本底即Blank孔的OD值一般要求控制在0.1以下(對于高敏ELISA可以適當放寬要求)。尤其是樣本值特別低的時分，本底過高會掩蓋意圖信號，導致無法測到樣本值。
在參加TMB顯色后，需實時調查標曲顯se狀況。通常在S5孔有肉眼可見的微弱藍色，即可停止反應。

Q6.樣本經不同梯度稀釋，核算得到的樣本值差異較大

有時分我們不清楚樣本中意圖蛋白的濃度怎么，應該怎么稀釋，那么我們就會做下預試驗，確認稀釋倍數。然而有時分同一樣本做了幾個不同梯度稀釋后，核算得到的樣本值之間差異較大，應該選擇哪一個稀釋倍數呢？

Q7.不同試劑盒中的組分能否通用

除非是公用的試劑如洗液、檢測緩沖液，其它組分不主張用其它試劑盒的組分，乃至是同一指標不同批次的試劑盒里的組分。這些組分(包含標準品、標準品稀釋液、檢測抗體、酶等)都是經過優化的，假如貿然運用其它試劑盒的組分，有可能對結果產生影響。